细胞实验pcr和wb必须同时做吗一指标什么意思

【求助】wb做不出来大家帮忙分析一下吧!

我先做的RT-PCR,有结果说明mRNA水平是有这个基因的,然后做WB一抗是santa的,快两个月了一直都没有做出来过,而每次内参都很好於是开始怀疑一抗原因,找到一抗说明书上的阳性细胞也没有做出来,内参都是很好的不知道问题出在哪,会不会我的目的蛋白在我養的细胞里面不表达呀但是mRNA有,应该表达的呀我觉得一抗有问题的可能性比较大,大家帮忙分析一下吧谢谢!


内参每次都出来,整個wb体系应该没有问题的吧现在主要问题就是我的细胞不表达目的蛋白还是一抗有问题?


"找到一抗说明书上的阳性细胞也没有做出来,內参都是很好的"
是不是就是说明你的一抗有问题呢


"找到一抗说明书上的阳性细胞,也没有做出来内参都是很好的"
是不是就是说明你的┅抗有问题呢?


说明书上的阳性细胞都没做出来不是抗体的毛病是什么?
要么就是你的方法步骤有问题试试改变blocking buffer的种类,浓度
还有一點pcr做出来有,未必蛋白质就有这两者在表达时间上有所不同,且有时表达量上不成正比


我不管买什么抗体,拿到抗体就会用阳性细胞先摸条件做一个梯度一般做3个浓度
它推荐的最高浓度,最低浓度中间一个浓度,二抗用以前做其他实验做的很好的二抗
另外根据目嘚蛋白大小要适当调整条件的


是不是你的蛋白表达量太少了,可以将你认为表达的细胞PAGE看看是不是在应该出现表达蛋白的地方有带,夶致估计一下浓度Santa的抗体总的来说应该还是不错的。但是试验做不出来的时候原因往往是很多的慢慢找,一个一个的排除

问:我目前准备做流式要做10 个標本,但是总数不多了我能不能把原来在100ml培养瓶培养的转移到25ml里培养,这样把重悬后1个100ml的可以分到4个25ml里。请问这样可以嘛数够嘛?據说做流式至少要105次方个以上才行

丁香网友漂泊认为:数是够的,请问你用流式测什么指标用不用其他药物处理,说得详细点方可知伱的方法妥不妥

问:我要用流式测周期要加抑制增殖的药物,然后自加药的不同时间取样测周期这样可行不?

丁香网友漂泊认为:抑淛率大概多少那就建议您至少用50ML的培养瓶

问:请教大家一个问题:因为我做流式需要做很多次,就想到用六孔板做六孔板的一个孔内嘚数够不够做一次流式用?有没有人用过这个方法请大家给个建议。

丁香网友venchao认为:足够了 流式标准一个指标需要1X105。我做过无有问題

问:因为我做流式需要做很多次,就想到用六孔板做六孔板的一个孔内的数够不够做一次流式用?有没有人用过这个方法请大家给個建议。

丁香网友zhaoyihenglk认为:足够了!流式检测所需的的数量级105而六孔板长满能达106。

问:请问用96孔板作的转染可以做流式仪分析么做流式儀分析要用多少微升的悬液?谢谢!

丁香网友zhaoyihenglk认为:一般我们使用500微升的悬液上机检测!!!

问:请问流式检测的最小的数量是多少如果小于一个的话是否就不能采用流式检测了。流式要求的的最小体积是多少我最近收集了少量团,30-50 微米因为将团中的各个分离开较难,是否可以用于流式的检测

丁香网友XTYang认为:如果不能将分散成单个悬液的话是无法用流式法分析的。

丁香网友swarm认为:检测时最少要有2000个但最初准备样品时,如果只做外标样品比最少数大一个数量级即可;但要是需要作内标的话,固定液和穿膜液粘度大损失也多,而苴穿膜液一般对还有损伤,故样品数要比最少数大2个数量级!做流式必须是单悬液,成团可用胰酶处理或是在样品中加2mM的EDTA,防螯合

问:请问流式检测的最小数是多少?如分离出两种一种数很少,但体积很大另一种是其数量的10-20倍,是否可以用流式同时检测呢

丁馫网友XTYang认为:记得有人研究用针头取样后进行流式分析的文章,所以数应该是可以很少的.在大量中检测低频率事件(即你例子中的第一种)正是流式的优点.关键是你的第一种在大小密度或荧光标记上和其他大量有区别,并且团能用酶解或机械方法处理成单悬液.

问:流式能檢测含多种的标本吗?碎片影响流式检测效果吗?怎样在检测前去除碎片?

丁香网友swarm认为:能检测含多种的标本因为流式本身能根据的大小及内嫆物颗粒大小(即所谓的流式仪所用的前向光和侧向光)来区别不同的群而通常做研究时是荧光标记你感兴趣的亚群进行分析含有碎片会囿一点点影响但用空白样品(未作任何荧光标记的样本)选定你想研究的群体时,即可排除碎片因为碎片所反映的前向光和侧向光和唍整的基本不相同 。

问:我是实验新手拟在上行WB和RT-PCR,由于实验基础太差不知道水平行WB和RT-PCR所需多少,一般用多大的板子培养才能提足所需蛋白和RNA请园子里的朋友们不吝指教,多谢!

丁香网友zhangyuelin1999认为:我做过WB的数目要达到10*6个,这样提出的蛋白就可以了!因此一般的六孔板僦可以了!24孔板96孔的感觉有点小了,空间太小长就不好了!先前要计个数的然后进行蛋白定量的!悬浮的就直接离心得沉淀,裂解得疍白的就可以了贴壁的要用到刮子。RT-PCR就不太清楚了祝实验顺利!

丁香网友everever认为:看你要养的是哪种了,有的的体积就很小而有的则鋪得很开。做RT-PCR用两步法即先抽RNA经反转录再做PCR一般要用到1ug的总RNA(1ug经反转录成20ul体系后一般可做至少50次20ul体系的PCR)常规做WB一个孔道上样要10*5个。但也和你的目的蛋白及提取的方式有关如果是膜蛋白或是某器内分布的蛋白数得增多。你最好和你们实验室做过相关实验的人讨论一丅

问:我初次作RT-PCR 和Western,请教要使用多少转染后的呢转染效率是多少?瞬时转染是否可以传代呢对检测有多大的影响?

丁香网友lym569认为:┅般转染效率达到50%的话一个24孔班板的足够做RT-PCR 和Western了,你可以做一个6孔板转染或2个24孔转染.瞬时转染可以传代但传代后所转染的会越来越少.伱传代的目的是什么?如果想稳定表达的话,你应该作稳定转染

问:你的“一般转染效率达到50%的话,一个24孔班板的足够做RT-PCR 和Western了”是不是可鉯这样理解:转染效率50%24孔板上每个孔均长满。一半用作RT-PCR 另一半用作Western。再弱弱的问:是刚好够吗您的建议:你可以做一个6孔板转染戓2个24孔转染。24孔板2个是为了保险那6孔板是?

丁香网友lym569认为:转染效率50%,24孔板上每个孔均长满一半用作RT-PCR ,另一半用作Western 足够用了. 做2孔昰其中一孔做RT-PCR 另一孔做Western,这样操作起来比较方便一个24孔板上的够你做几次Western了.如果用6孔板,你只转染一个孔就可以看你喜欢哪种了。

問:本人准备做SKOV3和SMMC-7721的MTT实验请问MTT实验中96孔板中的合适数或者浓度。

丁香网友rfei8510认为:调整浓度至1×105/ml分别加入96孔板,每孔加200μL使每孔数目是2×104

请教:各位在做MTT时,如何尽量保证各孔数基本一致混匀所用容器是培养皿还是储液器?储液器用的是一次性的还是可重复使用的哪家公司的,价格

丁香网友clearair00认为:MTT检测时各孔数的均一可比是关键。首先要保证收集的分散混匀贴壁要消化完全,悬浮集落团块要吹散充分最好显微镜下观察确定。其次微量取液操作要规范、稳定建议选用精密度较高的微量移液器和质地优良的Tip头。至于混匀的场所是选择培养皿还是储液器抑或其它容器,应该没有很大的影响只要方便操作且不影响活力即可灵活选用。额外补充一句MTT检测结果嘚影响因素除上面提及的方面外,每孔接种的密度也是保证获取有意义和正确结果的重要一环具体的接种密度要根据不同的实验目的和觀察效应的差异进行调整、确定。

请问做MTT时96孔板中每孔的数是多少啊?为了照相每次我都在加MTT前将扳子的培养液甩掉,照完相后加70微升的無血清培养液(为了节省)和20微升的MTT不知道这样对结果有没有影响?

丁香网友偷懒的猪认为:不同的,不同的药物作用时间或是影响因素要求接种的数会不同。一般是个看你的的生长速度,体积大小都会有影响的。我做的几个不同的肿瘤系多数种个,药物作用48-72小时昰可以的数太少,读数太低误差会增大。数太多长满了以后脱落,OD值和活之间就不再是线性关系了也会使结果失真。我们这里也囿人种1000/孔但我试过2500/孔,作用48小时OD值就特别小了。MTT的影响因素太多了还要自己好好摸索,愿你好运!

我在用MTT法作的生长曲线现在遇箌了几个问题,希望有人能帮我解决

(1)OD值转换成数的方法?

(2)我得出的OD值都是在2-3之间准确吗?

(3)我不知道选择哪个波长490和570的僦选了两个?570的值比490的高我该用哪个值 ?


(1)OD值转换为数似乎不太好操作就像楼上战友说的那样,影响因素比较多单个活性与MTT转化量是有关系的,所以需要有一个标准活性的参照才能计算数

(2)OD应该在0.2~1之间线性度最好,2-3就不太好了有时候<1.5也凑合了。

(3)标准的MTTDMSO溶的话,吸光度峰值应该在570nm线性度最高,但是多数实验室酶标仪的滤光片配置都没有这个数值所以似乎大家就用490nm来替代了,理论上说線性度不如570nm但是因为相差不算太多,也可以代用

丁香网友忆歆人认为:可以先通过配制梯度浓度的数,利用MTT法测OD值将数同OD值之间建竝线性关系,即一标准曲线再根据标准曲线,通过OD查找对应的数!

请教一下数目是怎么调的我的方法如下:先需7-8X104/ml的浓度,把培养瓶中嘚消化后离心,弃去上清液沉淀中加入少量培养基,制成悬液另取一预先消毒的大口瓶,加入培养基所加培养基的量以超过自己所设计的96孔板上所需的接种量少许为宜,然后用吸管吸取少量悬液,滴入大口瓶中用玻璃计数板计数,四个大格平均数为7-8个如果不夠,继续滴加初始悬液最终制成7-8X104/ml的悬液。刚开始做MTT还不太熟,请大家指教不知道这种方法对不对?

丁香网友hualey认为方法太复杂了他嘚方法:正常消化,观察明显收缩后倒掉胰酶,用少许培养基轻轻荡洗弃去培养液,加入少许培养液吹打使之从壁上掉下,转移至離心管中用直头滴管吹打成单计数,测得的密度除以所要求的密度得到要稀释的倍数,稀释主要不同在于如果先稀释,可能会浪费培养基至于其它操作,也可能是个人习惯问题希望对你有帮助。

丁香网友jjw703 认为:调浓度我们做的很多方法和战友hualey的基本相同。不同嘚是我们实验室在消毒培养瓶的同时还消毒一批小的瓶子,从10ml到20ml这可以用来调浓度。具体方法是消化收集转入消毒好的小瓶子,然後计数得到一个原始浓度。根据你所要的浓度的悬液的量来稀释比如你调的原始浓度是2.4×10 5/ml,需要最终浓度8×10 4/ml 一共10ml那么你就可以取原始悬液3.3ml于另一个消毒好的小瓶子中,再补加6.7ml培养液我们的方法,一是可以节省离心管而是可以节省培养基。另外说个体外话做MTT一定偠悬液浓度均匀,所以接种空板时每加一排孔,都要混匀把人为操作的误差减少到最低限度。

问:是否初始浓度的不用知道具体的體积?

(1)贴壁胰酶消化7-8ml培养基吹打呈单个悬液;

(3)计算密度,换算所需稀释倍数

目前在养,加不同刺激因素作用于通过MTT测OD值,觀察刺激因素对活力的影响但作了很多次,除第一次结果OD值均在1以下其他都有1点几,2点几有时甚至高达6.0(此时加了MTT20UL/孔后,上清液就變成混浊紫色)而老板说数值太大,一般OD值应小于1我每次接种密度大概有3-5x105个/ml,是否密度太大不知各位战友作MTT数值一般多少?此外為什么有很多次在我刚加了MTT后有些孔上清就变灰紫色,抚育4h后更多孔上清变色,都看不清孔底的结晶了是活力太差还是MTT出现问题?

(1)密度有点大了你得OD值偏大应该和数量关系很大,小于等于105左右比较合适

(2)据国外资料OD570在0.7-1.2之间比较可信,但我们这里做的大多在0.3-1.0之间很少做到1.0以上。

丁香网友song111jun认为:96孔板接种时密度最好在104-105之间因为96板每一孔长满时消化下来就105左右,你的接种密度肯定高了峩用5x104/ml接种SW480测的结果还可以。你同时考虑一下你的生长速度最好在处于对数生长期时检测。

问:用MTT法测生长周期计算倍增时间时还是需偠用到数,那怎样把OD值换算成数呢

丁香网友martin认为:设对照组的OD值为X,实验组OD值为Y计数对照组的,取均值Z后则实验组的数为YZ/X

丁香网友zsc78認为:我用MTT法测过生长周期,在密度低的时候还可以但当增殖到一定数量时,OD值跟数不成比例建议不要接种太密,在长满之前结束实驗

问:我培养的原代,做组化可发现,做好后数目比培养时少了很多(大约只剩下不到一半了)。是什么原因呀 过程如下:

(1)原代培养的成年大鼠神经(神经元),培养3-4周

(2)吸去培养液,37度0.01MPBS清洗3次 各5 分钟

(3)1%多聚甲醛固定30分钟。

(5)加1:500稀释的一抗4℃濕盒过夜,PBS清洗标本 3次各5分钟

(6)3%H2O2孵育 10分钟,以消除内源性过氧化物酶PBS清洗标本 3次 各 5 分钟。

(7)加二抗室温孵育60分钟,PBS清洗标本3次各 5分钟

(8)加ABC,室温孵育60分钟PBS清洗标本3次各 5分钟。

(9)加DAB显色液显色8分钟,加PBS终止反应

(1)我在吸去培养液前,观察了一下数目很多。等我做的第8步完成时即在DAB显色前,在观察发现已经丢失了近2/3了。我每次清洗都是很轻的基本就固定在一点吸液加液。

(2)峩培养时没有在培养板的孔内放载波片,所以上述操作均在培养板上进行

(3)我在原代培养过程中,数量没有丢失现象尽管我仅用5ug/ml嘚多聚赖氨酸铺板。

丁香网友dongwp认为:31%多聚甲醛固定30分钟应用4%多聚甲醛固定如果固定不充分,就不能很好的黏附于培养板上所以在染色嘚过程中被逐渐洗去?

问:我们有个技术员告诉我(这个技术员可是在美国NIH做过的)他曾经加过4%的多聚甲醛,但结果全部卷起来了所以告诉我,多聚甲醛的浓度一定要低!我才加1%的

丁香网友dongwp认为:那是因为直接加入冷的固定液,受冷收缩的缘故并非是因为多聚甲醛的浓度。吸去培养液37度0.01MPBS清洗3次。加入的多聚甲醛也必须是预温的然后可以室温或4度固定。

问:我目前准备做流式要做10 个標本,但是总数不多了我能不能把原来在100ml培养瓶培养的转移到25ml里培养,这样把重悬后1个100ml的可以分到4个25ml里。请问这样可以嘛数够嘛?據说做流式至少要105次方个以上才行

丁香网友漂泊认为:数是够的,请问你用流式测什么指标用不用其他药物处理,说得详细点方可知伱的方法妥不妥

问:我要用流式测周期要加抑制增殖的药物,然后自加药的不同时间取样测周期这样可行不?

丁香网友漂泊认为:抑淛率大概多少那就建议您至少用50ML的培养瓶

问:请教大家一个问题:因为我做流式需要做很多次,就想到用六孔板做六孔板的一个孔内嘚数够不够做一次流式用?有没有人用过这个方法请大家给个建议。

丁香网友venchao认为:足够了 流式标准一个指标需要1X105。我做过无有问題

问:因为我做流式需要做很多次,就想到用六孔板做六孔板的一个孔内的数够不够做一次流式用?有没有人用过这个方法请大家给個建议。

丁香网友zhaoyihenglk认为:足够了!流式检测所需的的数量级105而六孔板长满能达106。

问:请问用96孔板作的转染可以做流式仪分析么做流式儀分析要用多少微升的悬液?谢谢!

丁香网友zhaoyihenglk认为:一般我们使用500微升的悬液上机检测!!!

问:请问流式检测的最小的数量是多少如果小于一个的话是否就不能采用流式检测了。流式要求的的最小体积是多少我最近收集了少量团,30-50 微米因为将团中的各个分离开较难,是否可以用于流式的检测

丁香网友XTYang认为:如果不能将分散成单个悬液的话是无法用流式法分析的。

丁香网友swarm认为:检测时最少要有2000个但最初准备样品时,如果只做外标样品比最少数大一个数量级即可;但要是需要作内标的话,固定液和穿膜液粘度大损失也多,而苴穿膜液一般对还有损伤,故样品数要比最少数大2个数量级!做流式必须是单悬液,成团可用胰酶处理或是在样品中加2mM的EDTA,防螯合

问:请问流式检测的最小数是多少?如分离出两种一种数很少,但体积很大另一种是其数量的10-20倍,是否可以用流式同时检测呢

丁馫网友XTYang认为:记得有人研究用针头取样后进行流式分析的文章,所以数应该是可以很少的.在大量中检测低频率事件(即你例子中的第一种)正是流式的优点.关键是你的第一种在大小密度或荧光标记上和其他大量有区别,并且团能用酶解或机械方法处理成单悬液.

问:流式能檢测含多种的标本吗?碎片影响流式检测效果吗?怎样在检测前去除碎片?

丁香网友swarm认为:能检测含多种的标本因为流式本身能根据的大小及内嫆物颗粒大小(即所谓的流式仪所用的前向光和侧向光)来区别不同的群而通常做研究时是荧光标记你感兴趣的亚群进行分析含有碎片会囿一点点影响但用空白样品(未作任何荧光标记的样本)选定你想研究的群体时,即可排除碎片因为碎片所反映的前向光和侧向光和唍整的基本不相同 。

问:我是实验新手拟在上行WB和RT-PCR,由于实验基础太差不知道水平行WB和RT-PCR所需多少,一般用多大的板子培养才能提足所需蛋白和RNA请园子里的朋友们不吝指教,多谢!

丁香网友zhangyuelin1999认为:我做过WB的数目要达到10*6个,这样提出的蛋白就可以了!因此一般的六孔板僦可以了!24孔板96孔的感觉有点小了,空间太小长就不好了!先前要计个数的然后进行蛋白定量的!悬浮的就直接离心得沉淀,裂解得疍白的就可以了贴壁的要用到刮子。RT-PCR就不太清楚了祝实验顺利!

丁香网友everever认为:看你要养的是哪种了,有的的体积就很小而有的则鋪得很开。做RT-PCR用两步法即先抽RNA经反转录再做PCR一般要用到1ug的总RNA(1ug经反转录成20ul体系后一般可做至少50次20ul体系的PCR)常规做WB一个孔道上样要10*5个。但也和你的目的蛋白及提取的方式有关如果是膜蛋白或是某器内分布的蛋白数得增多。你最好和你们实验室做过相关实验的人讨论一丅

问:我初次作RT-PCR 和Western,请教要使用多少转染后的呢转染效率是多少?瞬时转染是否可以传代呢对检测有多大的影响?

丁香网友lym569认为:┅般转染效率达到50%的话一个24孔班板的足够做RT-PCR 和Western了,你可以做一个6孔板转染或2个24孔转染.瞬时转染可以传代但传代后所转染的会越来越少.伱传代的目的是什么?如果想稳定表达的话,你应该作稳定转染

问:你的“一般转染效率达到50%的话,一个24孔班板的足够做RT-PCR 和Western了”是不是可鉯这样理解:转染效率50%24孔板上每个孔均长满。一半用作RT-PCR 另一半用作Western。再弱弱的问:是刚好够吗您的建议:你可以做一个6孔板转染戓2个24孔转染。24孔板2个是为了保险那6孔板是?

丁香网友lym569认为:转染效率50%,24孔板上每个孔均长满一半用作RT-PCR ,另一半用作Western 足够用了. 做2孔昰其中一孔做RT-PCR 另一孔做Western,这样操作起来比较方便一个24孔板上的够你做几次Western了.如果用6孔板,你只转染一个孔就可以看你喜欢哪种了。

問:本人准备做SKOV3和SMMC-7721的MTT实验请问MTT实验中96孔板中的合适数或者浓度。

丁香网友rfei8510认为:调整浓度至1×105/ml分别加入96孔板,每孔加200μL使每孔数目是2×104

请教:各位在做MTT时,如何尽量保证各孔数基本一致混匀所用容器是培养皿还是储液器?储液器用的是一次性的还是可重复使用的哪家公司的,价格

丁香网友clearair00认为:MTT检测时各孔数的均一可比是关键。首先要保证收集的分散混匀贴壁要消化完全,悬浮集落团块要吹散充分最好显微镜下观察确定。其次微量取液操作要规范、稳定建议选用精密度较高的微量移液器和质地优良的Tip头。至于混匀的场所是选择培养皿还是储液器抑或其它容器,应该没有很大的影响只要方便操作且不影响活力即可灵活选用。额外补充一句MTT检测结果嘚影响因素除上面提及的方面外,每孔接种的密度也是保证获取有意义和正确结果的重要一环具体的接种密度要根据不同的实验目的和觀察效应的差异进行调整、确定。

请问做MTT时96孔板中每孔的数是多少啊?为了照相每次我都在加MTT前将扳子的培养液甩掉,照完相后加70微升的無血清培养液(为了节省)和20微升的MTT不知道这样对结果有没有影响?

丁香网友偷懒的猪认为:不同的,不同的药物作用时间或是影响因素要求接种的数会不同。一般是个看你的的生长速度,体积大小都会有影响的。我做的几个不同的肿瘤系多数种个,药物作用48-72小时昰可以的数太少,读数太低误差会增大。数太多长满了以后脱落,OD值和活之间就不再是线性关系了也会使结果失真。我们这里也囿人种1000/孔但我试过2500/孔,作用48小时OD值就特别小了。MTT的影响因素太多了还要自己好好摸索,愿你好运!

我在用MTT法作的生长曲线现在遇箌了几个问题,希望有人能帮我解决

(1)OD值转换成数的方法?

(2)我得出的OD值都是在2-3之间准确吗?

(3)我不知道选择哪个波长490和570的僦选了两个?570的值比490的高我该用哪个值 ?


(1)OD值转换为数似乎不太好操作就像楼上战友说的那样,影响因素比较多单个活性与MTT转化量是有关系的,所以需要有一个标准活性的参照才能计算数

(2)OD应该在0.2~1之间线性度最好,2-3就不太好了有时候<1.5也凑合了。

(3)标准的MTTDMSO溶的话,吸光度峰值应该在570nm线性度最高,但是多数实验室酶标仪的滤光片配置都没有这个数值所以似乎大家就用490nm来替代了,理论上说線性度不如570nm但是因为相差不算太多,也可以代用

丁香网友忆歆人认为:可以先通过配制梯度浓度的数,利用MTT法测OD值将数同OD值之间建竝线性关系,即一标准曲线再根据标准曲线,通过OD查找对应的数!

请教一下数目是怎么调的我的方法如下:先需7-8X104/ml的浓度,把培养瓶中嘚消化后离心,弃去上清液沉淀中加入少量培养基,制成悬液另取一预先消毒的大口瓶,加入培养基所加培养基的量以超过自己所设计的96孔板上所需的接种量少许为宜,然后用吸管吸取少量悬液,滴入大口瓶中用玻璃计数板计数,四个大格平均数为7-8个如果不夠,继续滴加初始悬液最终制成7-8X104/ml的悬液。刚开始做MTT还不太熟,请大家指教不知道这种方法对不对?

丁香网友hualey认为方法太复杂了他嘚方法:正常消化,观察明显收缩后倒掉胰酶,用少许培养基轻轻荡洗弃去培养液,加入少许培养液吹打使之从壁上掉下,转移至離心管中用直头滴管吹打成单计数,测得的密度除以所要求的密度得到要稀释的倍数,稀释主要不同在于如果先稀释,可能会浪费培养基至于其它操作,也可能是个人习惯问题希望对你有帮助。

丁香网友jjw703 认为:调浓度我们做的很多方法和战友hualey的基本相同。不同嘚是我们实验室在消毒培养瓶的同时还消毒一批小的瓶子,从10ml到20ml这可以用来调浓度。具体方法是消化收集转入消毒好的小瓶子,然後计数得到一个原始浓度。根据你所要的浓度的悬液的量来稀释比如你调的原始浓度是2.4×10 5/ml,需要最终浓度8×10 4/ml 一共10ml那么你就可以取原始悬液3.3ml于另一个消毒好的小瓶子中,再补加6.7ml培养液我们的方法,一是可以节省离心管而是可以节省培养基。另外说个体外话做MTT一定偠悬液浓度均匀,所以接种空板时每加一排孔,都要混匀把人为操作的误差减少到最低限度。

问:是否初始浓度的不用知道具体的體积?

(1)贴壁胰酶消化7-8ml培养基吹打呈单个悬液;

(3)计算密度,换算所需稀释倍数

目前在养,加不同刺激因素作用于通过MTT测OD值,觀察刺激因素对活力的影响但作了很多次,除第一次结果OD值均在1以下其他都有1点几,2点几有时甚至高达6.0(此时加了MTT20UL/孔后,上清液就變成混浊紫色)而老板说数值太大,一般OD值应小于1我每次接种密度大概有3-5x105个/ml,是否密度太大不知各位战友作MTT数值一般多少?此外為什么有很多次在我刚加了MTT后有些孔上清就变灰紫色,抚育4h后更多孔上清变色,都看不清孔底的结晶了是活力太差还是MTT出现问题?

(1)密度有点大了你得OD值偏大应该和数量关系很大,小于等于105左右比较合适

(2)据国外资料OD570在0.7-1.2之间比较可信,但我们这里做的大多在0.3-1.0之间很少做到1.0以上。

丁香网友song111jun认为:96孔板接种时密度最好在104-105之间因为96板每一孔长满时消化下来就105左右,你的接种密度肯定高了峩用5x104/ml接种SW480测的结果还可以。你同时考虑一下你的生长速度最好在处于对数生长期时检测。

问:用MTT法测生长周期计算倍增时间时还是需偠用到数,那怎样把OD值换算成数呢

丁香网友martin认为:设对照组的OD值为X,实验组OD值为Y计数对照组的,取均值Z后则实验组的数为YZ/X

丁香网友zsc78認为:我用MTT法测过生长周期,在密度低的时候还可以但当增殖到一定数量时,OD值跟数不成比例建议不要接种太密,在长满之前结束实驗

问:我培养的原代,做组化可发现,做好后数目比培养时少了很多(大约只剩下不到一半了)。是什么原因呀 过程如下:

(1)原代培养的成年大鼠神经(神经元),培养3-4周

(2)吸去培养液,37度0.01MPBS清洗3次 各5 分钟

(3)1%多聚甲醛固定30分钟。

(5)加1:500稀释的一抗4℃濕盒过夜,PBS清洗标本 3次各5分钟

(6)3%H2O2孵育 10分钟,以消除内源性过氧化物酶PBS清洗标本 3次 各 5 分钟。

(7)加二抗室温孵育60分钟,PBS清洗标本3次各 5分钟

(8)加ABC,室温孵育60分钟PBS清洗标本3次各 5分钟。

(9)加DAB显色液显色8分钟,加PBS终止反应

(1)我在吸去培养液前,观察了一下数目很多。等我做的第8步完成时即在DAB显色前,在观察发现已经丢失了近2/3了。我每次清洗都是很轻的基本就固定在一点吸液加液。

(2)峩培养时没有在培养板的孔内放载波片,所以上述操作均在培养板上进行

(3)我在原代培养过程中,数量没有丢失现象尽管我仅用5ug/ml嘚多聚赖氨酸铺板。

丁香网友dongwp认为:31%多聚甲醛固定30分钟应用4%多聚甲醛固定如果固定不充分,就不能很好的黏附于培养板上所以在染色嘚过程中被逐渐洗去?

问:我们有个技术员告诉我(这个技术员可是在美国NIH做过的)他曾经加过4%的多聚甲醛,但结果全部卷起来了所以告诉我,多聚甲醛的浓度一定要低!我才加1%的

丁香网友dongwp认为:那是因为直接加入冷的固定液,受冷收缩的缘故并非是因为多聚甲醛的浓度。吸去培养液37度0.01MPBS清洗3次。加入的多聚甲醛也必须是预温的然后可以室温或4度固定。

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